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Considere o modelo clássico de análise genética da resistência e patogeniciadade (modelo gene-a-gene), no patossistema Solanum tuberosum - Phytophthora infestans, cujo patógeno é necrotrófico e portador de elevada variabilidade de raças. Analise o quadro abaixo com as reações dos hospedeiros (patodemes) frente às diferentes raças do patógeno (patotipos). Nesse patossistema, ‘Rx’ corresponde ao gene dominante de resistência do hospedeiro, que produz um receptor (x) raça-específica do patógeno. ‘Ax’ corresponde ao gene de avirulência dominante do patógeno, que produz um elicitor (x) clone-específico do hospedeiro.
|
Clones
do |
Raças
do
Patógeno |
|||||||
|
A1A2A3 |
a1A2A3 | A1a2A3 | A1A2a3 | a1a2a3 | a1a2A3 | a1A2a3 |
A1a2a3 |
|
|
1. R0 |
S | S | S | S | S | S | S | S |
|
2. R1 |
S | S | R | R | R | S | S | R |
|
3. R2 |
R | R | S | R | S | S | R | S |
|
4. R3 |
S | R | R | S | R | R | S | S |
|
5. R1R2 |
S | R | R | R | R | S | R | R |
|
6. R1R3 |
R | R | R | R | S | R | S | R |
|
7. R2R3 |
S | R | R | R | R | R | R | S |
|
8. R1R2R3 |
R | R | R | R | S | R | R | R |
(*) R0 significa ausência de genes dominantes no hospedeiro associados aos fatores de virulência/avirulência 1, 2 e 3 do patógeno, assim representando hospedeiros portadores de genótipos r1r1r2r2r3r3; R1 representa hospedeiros com genótipos R1R1r2r2r3r3, R2 representa hospedeiros com genótipos r1r1R2R2r3r3, assim por diante.
Assinale a alternativa que contém todas as reações (R ou S) do hospedeiro corretas.
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As linhagens P1 e P2 de feijão (Phaseolus vulgaris L.) e a geração F1 resultante da combinação entre essas duas linhagens apresentaram reação de resistência qualitativa ao isolado 27 de Colletotrichum lindemuthianum. Esse isolado (27) foi inoculado na população RC1F1 [(P1 x P2) x P2], constituída por 138 plantas, das quais 106 apresentaram reação de resistência e 32 apresentaram reação de suscetibilidade. Os resultados do teste de qui-quadrado, aplicado às proporções ¾ resistentes : ¼ suscetíveis (3R:1S), estão apresentados na Tabela.
Tabela Frequências absolutas (observada e esperada) de plantas de milho das linhagens P1 e P2 e gerações F1 e RC1F1, quanto a reação de resistência e suscetibilidade a Colletotrichum lindemuthianum.
| Genitores e Gerações |
Frequência Observada | Frequência Esperada |
X2(B) |
|
| Resistentes/ (Total de Plantas) |
Suscetíveis/ (Total de Plantas) |
R S(A) | ||
| Linhagem P1 Linhagem P2 |
6 / (6) 6 / (6) |
0 0 |
6R:0S 6R:0S |
- - |
| F1: (P1 x P2) |
8 / (8) | 0 | 8R:0S | - |
| RC1F1: [(P1 x P2) x P2] |
106 / (138) | 32 / (138) | 103,5 R: 34,5 S | ns |
(A) R: plantas resistentes; S: plantas suscetíveis. (B) ns: não significativo (P > 0,05).
Com base nas informações acima, analise as afirmativas abaixo, quanto às hipóteses genéticas para o controle da resistência a Colletotrichum lindemuthianum.
1. Não existe uma explicação Mendeliana para a segregação 3R:1S, na geração RC1F1, pois essa proporção aparece somente em gerações F2 segregantes para um gene (monogênica) de resistência dominante.
2. A herança genética da resistência pode ser explicada pela segregação de dois genes (digênica), na geração de RC1F1 (3R:1S), a partir da combinação entre duas linhagens resistentes ao isolado 27.
3. A resistência das linhagens P1 e P2 ao isolado (27) pode ser conferida por dois genes pertencentes a diferentes grupos de ligação.
4. A herança genética da resistência pode ser explicada por dois genes (digênica), na geração RC1F1 (3R:1S), somente se os locos que controlam a resistência estiverem ligados, ou seja, se pertencerem ao mesmo grupo de ligação.
5. A resistência genética ao isolado (27) pode ser governada por dois genes (locos) de grande efeito fenotípico, com interações alélicas distintas em cada loco.
6. A herança genética da resistência ao patógeno pode ser explicada pela segregação monogênica 3R:1S, na geração de RC1F1, a partir da combinação entre duas linhagens resistentes ao isolado 27.
Assinale a alternativa que indica todas as afirmativas corretas.
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A Tabela contém a distribuição de classes e o percentual de genótipos portadores de locos com genótipos homozigóticos (x) e heterozigóticos (n-x), nas gerações F2 e F6, originadas de um cruzamento biparental entre duas linhagens homozigóticas de alface, as quais estão segregando para quatro locos (n = 4; locos A, B, C e D) independentemente um do outro. As linhagens genitoras P1 e P2 possuem genótipos A1A1B2B2C1C1D1D1 e A2A2B1B1C2C2D2D2, respectivamente. A contribuição dos alelos para a expressão do caráter concentração de beta caroteno, nas folhas (μg g–1), é acumulativa e aditiva, sendo
A1 = B1 = C1 = D1 = 20,0 e A2 = B2 = C2 = D2 = 5,0.
Tabela Distribuição de classes contendo locos com genótipos homozigóticos e heterozigóticos, em populações das gerações F2 e F6, segregando para quatro locos.
|
Locos |
Plantas F2 |
Plantas F6 |
|||
|
Homozigoto |
Heterozigoto (n-x) |
Distribuição de classes | (%) | Distribuição de classes |
(%) |
| 0 | 4 | 1 | 6,25 | 1 | 0,000095 |
| 1 | 3 | 4 | 25,0 | 124 | 0,0118 |
| 2 | 2 | 6 | 37,5 | 5.766 | 0,5499 |
| 3 | 1 | 4 | 25,0 | 119.164 | 11,3643 |
| 4 | 0 | 1 | 6,25 | 923.521 | 88,0738 |
| 16 | 100 | 1.048.576 | 100 | ||
Distribuição de classes:
[1 + (2m - 1)]n = [( n! ) / (n-x)! x!] . 1n-x.(2m – 1)x
onde m é o número de gerações de autofecundação a partir de F1; n é o número de locos gênicos segregantes; x é o número de locos com genótipos homozigóticos.
Com base nas informações contidas na tabela acima, escolha a alternativa correta para as seguintes perguntas:
1. Qual a proporção de plantas superiores A1A1B1B1C1C1D1D1, nas gerações F2 e F6?
2. Qual a proporção de plantas A1A2B1B2C1C1D1D1, nas gerações F2 e F6?
3. É possível ocorrerem plantas segregantes transgressivas na F2, para uma população de 1024 plantas?
Assinale a alternativa correta.
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A resistência qualitativa do milho ao fungo patogênico Exserohilum turcicum é governada por cinco genes dominantes (A, B, C, N e P) e dois genes recessivos (y e w). Os locos A e P estão ligados sobre o grupo de ligação 2 (bin 2.08); os locos B e N estão ligados sobre o grupo de ligação 8 (bin 8.06); os locos Y e W estão localizados sobre os cromossomos 1 e 3, respectivamente, e o loco C está localizado no cromossomo 5. Cada um desses genes de resistência pode ser superado por uma raça-específica do patógeno. Um melhorista de milho deseja desenvolver uma população sintética, para utilizá-la em programas de melhoramento de híbridos como fonte de novas linhagens elites portadoras de genes de resistência a esse patógeno. Considere que a população sintética será obtida a partir do cruzamento ao acaso entre plantas F1 derivadas da combinação entre duas linhagens, cujos genótipos são AA BB CC nn pp WW YY (Linhagem P1) e AA bb CC NN pp WW yy (Linhagem P2), e que o valor de recombinação entre os locos A e P é de 40% e entre os locos B e N é de 20%.
Com base nessas informações, responda:
1. Qual o número de genótipos diferentes para o caráter resistência a Exserohilum turcicum, na população sintética resultante da polinização ao acaso entre plantas F1?
2. Qual a percentagem de plantas resistentes AA BB CC NN pp WW yy, na população sintética constituída, admitindo ausência de erro de amostragem (população perfeita)?
3. Qual deve ser o tamanho mínimo da população sintética perfeita (sem erro de amostragem), para encontrar ao menos 20 plantas portadoras de genótipo AA BB CC NN pp WW yy?
Assinale a alternativa correta.
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Na utilização de centrífugas em laboratório, devido aos diferentes tamanhos de raio e inclinação dos rotores, a unidade utilizada como indicador de parâmetro de centrifugação geralmente é a Força G. Porém, para operar de forma correta a centrífuga, em alguns casos torna-se necessário que o técnico em laboratório conheça a relação entre RPM e Força G.
Sendo assim, se uma centrífuga com 50 cm de raio, inclinação do rotor de 1º, for programada para 1000 rpms, estará respectivamente a:
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O microscópio ótico:
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Equipamento utilizado para determinação de crescimento celular por leitura de absorbância:
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Antes de cada utilização da balança analítica, deve-se:
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Em caso de queimadura com solução alcalina, deve-se:
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No gerenciamento de resíduos microbiológicos de laboratório, analise as afirmativas abaixo:
1. Após autoclavados, os resíduos líquidos podem ser descartados na pia, desde que não contenham componentes químicos que impossibilitem essa ação.
2. Todos os resíduos líquidos devem ser separados e acondicionados em recipiente próprio, independentemente de serem autoclavados.
3. Após autoclavados, os resíduos líquidos com pH entre 6,5 e 7,5 devem, necessariamente, passar por neutralização de pH antes de serem descartados na pia.
Assinale a alternativa que indica todas as afirmativas corretas.
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